用于檢測HLA?B27基因的檢測試劑盒和方法與流程

本發明屬于生物技術領域，具體涉及一種用熒光定量PCR技術檢測HLA-B27基因的檢測試劑盒和方法。

背景技術：

人類白細胞抗原(HLA)別名主要組織相容性抗原(MHC)，位于第6號染色體短臂6p21.3區域，全長約3.6Mb。HLA基因是目前已知的人類最復雜基因系統，根據其在染色體上的排列可分為3類：Ⅰ類基因區包含HLA-A、HLA-B與HLA-C；Ⅱ類基因區包含HLA-DR、HLA-DP與HLA-DQ；Ⅲ類基因區位于上述兩類基因區域之間，主要編碼補體、熱休克蛋白等產物。

1973年Brewerton首次報道人類組織相容性抗原HLA-B27(human leucocyte antigen B27,HLA-B27)與強直性脊柱炎(AS)高度相關。AS是一種以骶髂關節和脊柱慢性炎癥為主的自身免疫性疾病。該疾病病因尚未明確，一般認為本病發生與遺傳因素和感染有關。該疾病直接診斷證據為，X線下脊柱的特征性改變及骶髂關節炎，但在該疾病發生早期，這種影像學診斷特征往往不明顯，容易發生誤診和漏診。近來，通過全基因組關聯分析，證實HLA-B27基因與AS發生高度相關。HLA-B27是目前發現的與AS關聯性最強的基因，對AS易感性貢獻率為16％。國內外學者大量的研究表明90％以上AS患者為HLA-B27陽性，而正常人群中只有5％～10％的個體為HLA-B27陽性。即便HLA-B27陽性是AS確診的既非必要也非充分條件，但HLA-B27對AS的早期診斷和治療具有重要價值。

與HLA I類其他分子一樣，HLA-B27具有較高的遺傳多態性。這些多態性位點大多數分布在第2、3外顯子區域，編碼抗原結合槽的α1和α2結構域。截止2016年10月，已發現的HLA-B27亞型已達155個，命名為HLA-B*27:01～HLA-B*27:156，其中，HLA-B*27:22由于在以后的研究中，發現其序列錯誤，因此被取消了該命名。

研究發現，不同種族、不同地區人群疾病相關HLA-B27亞型基因分布差異很大，HLA-B*27:05多見于高加索人，HLA-B*27:02多見于地中海人，HLA-B*27:04多見于中國人。在中國人群中，HLA-B*27:04、HLA-B*27:05與AS均有較強的關聯性，但前者關聯性強于后者。而另外的亞型如HLA-B*27:06和HLA-B*27:09則被認為是對AS發生有保護作用。

目前，HLA-B27基因檢測方法，主要有聚合酶鏈反應-直接測序(PCR-SBT)法、序列特異性引物-聚合酶鏈式反應(PCR-SSP)法、流式細胞儀(FCM)法等。PCR-SBT法，是基于測序分型的聚合酶鏈反應，可直接獲得DNA序列，確定所有存在的多態性，為最直接、最直觀的方法。但是，由于基因結構的特殊性和所設計PCR引物等因素，測序結果可能會出現套峰，不利于結果的判讀。且測序對試劑和儀器有特殊要求，操作復雜，成本相對較高，速度慢、通量低，不適合臨床疾病快速輔助診斷。PCR-SSP法，其原理是根據已知HLA-B27基因片段，設計特異性引物直接進行PCR擴增，并通過瓊脂糖凝膠電泳檢測PCR產物，盡管該方法對儀器要求不高、操作簡單、結果直觀，在基層醫療衛生單位易于推廣，但該方法最大的弊端是步驟多、操作易污染，易出現假陽性，無法實現批量化和自動化。流式細胞儀法(FCM)具有快速、自動化程度高，適合大規模樣本檢測的優點，但該方法中依賴的熒光單克隆抗體特異性不高，易與多種其他HLA抗原，如HLA-B7、HLA-B22等發生干擾反應，影響結果準確性。此外，流式細胞儀法屬于血清學水平檢測，無法確定樣本準確的基因型。且流式細胞儀器材昂貴，維護成本高，對操作人員技術要求較高，因此限制了它在基層醫療單位的推廣與應用。

技術實現要素：

為克服現有技術檢測能力的不足，本發明的目的是提供一種用于檢測HLA-B27基因的檢測試劑盒。本發明的另一個目的是提供一種用于檢測HLA-B27基因的檢測方法。

為實現上述目的，本發明采用以下技術方案：

一種用于檢測HLA-B27基因的檢測試劑盒，該檢測試劑盒包括用于HLA-B*27:04基因檢測的引物對1及檢測探針1，和用于HLA-B*27:05基因檢測的引物對2及檢測探針2；其中，所述引物對1的核苷酸序列如SEQ ID No.1和SEQ ID No.2所示，所述檢測探針1的核苷酸序列如SEQ ID No.3所示，所述引物對2的核苷酸序列如SEQ ID No.4和SEQ ID No.5所示，所述檢測探針2的核苷酸序列如SEQ ID No.6所示。

如上所述的檢測試劑盒，優選地，所述檢測試劑盒還包括內部質控，其包括質控引物對和質控探針，所述質控引物對的核苷酸序列如SEQ ID No.7和SEQ ID No.8所示，所述質控探針的核苷酸序列如SEQ ID No.9所示。

如上所述的檢測試劑盒，優選地，所述檢測試劑盒還包括HLA-B*27:04陽性對照物、HLA-B*27:05陽性對照物，其中，所述HLA-B*27:04陽性對照物含有如SEQ ID No.10和SEQ ID No.12所示的核苷酸序列，所述HLA-B*27:05陽性對照物含有如SEQ ID No.11和SEQ ID No.12所示的核苷酸序列。

如上所述的檢測試劑盒，優選地，所述檢測探針1和所述檢測探針2的5＇端連接熒光基團，3＇端連接淬滅基團。

如上所述的試劑盒，優選地，試劑盒還包括10×PCR緩沖液、熱啟動DNA聚合酶、dNTPs、礦物油、陰性對照物：ddH₂O。

如上所述的試劑盒，優選地，所述熒光基團為FAM、JOE、CY3、HEX、VIC中任意一種，所述淬滅基團為MGB、BHQ1、TAMRA、BHQ2中任意一種。

一種快速檢測HLA-B27基因的方法，該方法包括以下步驟：

(1)從樣品中提取DNA；

(2)對提取的所述DNA，同時進行HLA-B*27:04基因檢測的反應體系1和HLA-B*27:05基因檢測的反應體系2的實時熒光PCR擴增；其中，在所述反應體系1中檢測引物對1的核苷酸序列如SEQ ID No.1和SEQ ID No.2所示，檢測探針1的核苷酸序列如SEQ ID No.3所示；在所述反應體系2中檢測引物對2的核苷酸序列如SEQ ID No.4和SEQ ID No.5所示，檢測探針2的核苷酸序列如SEQ ID No.6所示，所述檢測探針1和所述檢測探針2的5＇端連接熒光基團，3＇端連接淬滅基團；

(3)收集熒光信號，選擇對應熒光基團的熒光檢測模式，基線調整取3～15個循環的熒光信號，以閾值線剛好超過正常陰性對照的最高點設定閾值線；

(4)結果判定：待測樣品的所述HLA-B*27:04基因檢測的反應體系1或所述HLA-B*27:05基因檢測的反應體系2任一體系的熒光擴增曲線呈現典型的“S”型曲線，且Ct值≤26，則該待檢樣本基因型為HLA-B27陽性，否則為HLA-B27陰性。

如上所述的方法，優選地，在步驟(2)中，所述反應體系1和所述反應體系2中還包括有作為內部質控的質控引物對和質控探針，所述質控引物對的核苷酸序列如SEQ ID No.7和SEQ ID No.8所示，所述質控探針的核苷酸序列如SEQ ID No.9所示，該質控探針的5＇端連接有不同于所述檢測探針1和檢測探針2的熒光基團，3＇端連接有不同于所述檢測探針1和檢測探針2的淬滅基團。

如上所述的方法，優選地，在步驟(2)中，如上所述的方法，優選地，在步驟(2)中，在所述反應體系1和所述反應體系2中，各自的檢測引物和檢測探針的終濃度均為300nmol/L，所述質控引物對和質控探針的終濃度均為200nmol/L；所述檢測探針1和檢測探針2的5＇端連接FAM，3＇端連接MGB，所述質控探針的5＇端連接JOE，3＇端連接TAMRA。

如上所述的方法，優選地，步驟(2)中，所述實時熒光PCR擴增的反應程序為：

第一階段：95℃變性10min；

第二階段：94℃30s，58℃30s，10個循環；

第三階段：94℃30s，60℃30s，30個循環；

信號收集：第三階段收集熒光信號。

如上所述的方法，優選地，在所述步驟(4)中，檢測樣本的所述內部質控的JOE信號應有典型的“S”型擴增曲線，且Ct值<25，再確定所述樣本DNA的陰陽性；否則應重新進行檢測。

如上所述的方法，優選地，在步驟(2)中，還設有陽性對照和陰性對照，所述陽性對照為以含有如SEQ ID No.10和SEQ ID No.12核苷酸序列所示的HLA-B*27:04陽性對照物、含SEQ ID No.11和SEQ ID No.12核苷酸序列所示的HLA-B*27:05陽性對照物為模板，進行所述反應體系1和反應體系2的實時熒光PCR擴增；

所述陰性對照為以ddH₂O為模板，進行所述反應體系1和反應體系2的實時熒光PCR擴增；

在步驟(4)中，所述陽性對照的反應體系1和反應體系2的FAM均有典型的“S”型擴增曲線，FAM信號的Ct值≤26，且JOE有典型的“S”型擴增曲線且JOE信號的Ct值<25，符合要求；

所述陰性對照的反應體系1和反應體系2的FAM、JOE均沒有擴增曲線或Ct值，符合要求；否則，應重新進行體系配置，重新檢測。

本發明公開了一種用于快速檢測HLA-B27基因的檢測試劑盒，同時建立了一種比較高效、靈敏的HLA-B27基因快速檢測方法。其檢測試劑盒，使用方便，操作簡單，大大簡化了操作過程，并減少了在操作過程的污染，檢測效果好，具有高靈敏度、高特異性、高選擇性的特點，并實現對HLA-B27基因的分型檢測。提供的檢測方法采用完全閉管操作，操作簡單、方便快捷，通過直接檢測PCR過程中熒光信號Ct值獲得檢測結果，不需要PCR電泳檢測等后處理，克服了常規PCR技術的易污染、假陽性率高的缺點，能有效避免非特異性擴增，并且適合大批量樣本的檢測。

本發明提供的檢測試劑盒及方法，用于檢測HLA-B27基因時，為了避免漏檢、及初步判斷樣本DNA加入量是否在允許范圍內，設有內部質控；為了判斷檢測體系是否正常，還設有陰性對照和檢測引物的陽性對照；為了避免假陰性，設有陽性對照，其陽性對照檢測呈陽性結果，說明檢測體系沒有問題，不會出現假陰性結果及漏檢，如陽性對照檢測呈陰性結果，說明檢測體系有問題，或試劑已經失效，應重新配置體系進行檢測；為了避免假陽性，設有陰性對照，其陰性對照檢測呈陰性結果，說明檢測體系沒有問題，不會出現假陽性結果，如陰性對照檢測呈陽性結果，說明檢測體系有問題，已被污染，應重新配置體系進行檢測；本發明提供檢測試劑盒及方法設計嚴謹，有效避免漏檢、錯檢的可能。

與現有技術相比，本發明有如下有益效果和顯著進步：

(1)本發明基于Taqman-MGB探針的熒光定量PCR法，操作簡單，PCR結束后無需開蓋進一步分析，因此減少了交叉污染的風險；

(2)本發明針對中國人群HLA-B27亞型基因的分布特點，選取了中國人群中與強直性脊柱炎相關性最高的2個基因，即HLA-B*27:04和HLA-B*27:05。針對這2個基因特異性保守序列分別設計了一套引物，且這些特異性位點與引物3'末端互補配對，而陰性DNA樣本由于與引物3'末端存在幾個堿基的錯配，限制了其PCR擴增。在靠近上游引物位置上，設計了一段Taqman-MGB探針，該探針只與HLA-B*27:04或HLA-B*27:05陽性DNA保守位點結合，保證了檢測結果的特異性。本發明方法檢測結果與測序法100％吻合，結果可靠，特異性強；

(3)本發明方法靈敏度高，可準確檢出低至0.1ng/μL的基因組DNA，只需少量DNA樣本即可完成檢測；

(4)本發明所提供的檢測方法能在90分鐘內完成檢測，所需時間遠低于其他法，特別適合臨床疾病快速診斷。

附圖說明

圖1為本發明優選試劑盒中HLA-B*27:04反應體系靈敏度檢測的擴增曲線。

圖2為本發明優選試劑盒中HLA-B*27:05反應體系靈敏度檢測的擴增曲線。

圖3為本發明優選試劑盒對HLA-B*27:04陽性樣本的擴增曲線。

圖4為本發明優選地試劑盒對HLA-B*27:05陽性樣本的擴增曲線。

圖5為本發明優選地試劑盒對HLA-B*27:04/HLA-B*27:05雜合型樣本的擴增曲線。

圖6為本發明優選地試劑盒對HLA-B*27陰性樣本的擴增曲線。

具體實施方式

以下結合具體實例對本發明做進一步詳細說明，并非對本發明的限定，本發明的實施方式并不限于此，本發明提供的核苷酸序列的互補序列也可實現本發明，如無特殊說明，所用試劑為常規試劑，因此凡依照本公開內容所作出的本領域的等同替換，均屬于本發明的保護范圍。

實施例1引物、探針、陽性參考基因序列設計

根據NCBI數據庫以及IPD-IMGT/HLA數據庫(http://www.ebi.ac.uk/ipd/imgt/hla/)公布的HLA-B*27:04(5個亞型)、HLA-B*27:05(31個亞型)基因序列以及其參考座位HLA-B*07:02:01基因序列，通過序列比對確定該基因的特異性保守位點，根據以上多態性位點分別設計引物和探針，本發明所設計的引物和探針均與HLA-B*27:04或HLA-B*27:05基因的保守性位點結合，能檢測出其所有基因亞型。經過試驗驗證，最終確定檢測引物和探針序列如下：

(1)用于HLA-B*27:04基因檢測的PCR引物對1及其特異性檢測探針1，核苷酸序列如下：

HLA-B*27:04基因擴增上游引物(1F)，SEQ ID No.1：

5'-GCAAGGCCAAGGCACAGAC-3'；

HLA-B*27:04基因擴增下游引物(1R)，SEQ ID No.2：

5'-CTCTCAGCTGCTCCGGCT-3'；

HLA-B*27:04基因檢測探針(1P)，SEQ ID No.3：

FAM 5'-CGAGAGAGCCTGCGGACCCT-3'；

(2)用于HLA-B*27:05基因檢測的PCR引物對2及其特異性檢測探針2：

HLA-B*27:05基因擴增上游引物(2F)，SEQ ID No.4：

5'-GGAGTATTGGGACCGGGAG-3'；

HLA-B*27:05基因擴增下游引物(2R)，SEQ ID No.5：

5'-CTCTCAGCTGCTCCGGCA-3'；

HLA-B*27:05基因檢測探針(2P)，SEQ ID No.6：

5'-CGAGAGGACCTGCGGACCCT-3'。

根據HLA數據庫公布的HLA-B*27:04(5個亞型)和HLA-B*27:05(31個亞型)基因序列，分別設計了其陽性參考基因序列。HLA-B*27:04、HLA-B*27:05陽性參考基因序列分別如SEQ ID No.10、SEQ ID No.11所示。

SEQ ID No.10：

5'-GCAAGGCCAAGGCACAGACTGACCGAGAGAGCCTGCGGACCCTGCTCCGCTACTACAACCAGAGCGAGGCCGGGTCTCACACCCTCCAGAATATGTATGGCTGCGACGTGGGGCCGGACGGGCGCCTCCTCCGCGGGTACCACCAGGACGCCTACGACGGCAAGGATTACATCGCCCTGAACGAGGACCTGAGCTCCTGGACCGCCGCGGACACGGCGGCTCAGATCACCCAGCGCAAGTGGGAGGCGGCCCGTGAGGCGGAGCAGCTGAGAG-3'

SEQ ID No.11：

5'-GGAGTATTGGGACCGGGAGACACAGATCTGCAAGGCCAAGGCACAGACTGACCGAGAGGACCTGCGGACCCTGCTCCGCTACTACAACCAGAGCGAGGCCGGGTCTCACACCCTCCAGAATATGTATGGCTGCGACGTGGGGCCGGACGGGCGCCTCCTCCGCGGGTACCACCAGGACGCCTACGACGGCAAGGATTACATCGCCCTGAACGAGGACCTGAGCTCCTGGACCGCCGCGGACACGGCGGCTCAGATCACCCAGCGCAAGTGGGAGGCGGCCCGTGTGGCGGAGCAGCTGAGAG-3'。

在本發明具體實施過程中，所加待檢樣本DNA中可能存在PCR抑制劑，這些抑制劑可能嚴重影響PCR正常擴增，產生假陰性結果；另外，操作過程中的樣品DNA漏加也可能導致假陰性結果。因此，本發明還提供了一對針對人類GAPDH基因的內部質控的質控引物和探針，用于規避上述風險，確保檢測結果的準確性和可靠性。本發明選用的內部質控是人類看家基因GAPDH的一段DNA序列，看家基因高度保守并且持續表達，在實驗中有利于除去不同標本在產量及質量等上的差別，能夠對實驗結果進行校正和標準化。因此GAPDH基因作為人類基因組的保守基因，不僅可以作為試劑盒內部的質控，還可作為樣本DNA的質控。通過對內部質控的質控引物對、質控探針的篩選和體系優化，建立了實時熒光PCR內部質控檢測體系，要求設計的質控引物對、質控探針及擴增產物，不會與用于檢測HLA-B*27:04和HLA-B*27:05基因的引物對、探針等有交叉反應，及引物二聚體的形成，優選地，質控引物對(3F、3R)、質控探針(3P)如下：

質控上游引物(3F)，SEQ ID No.7：5'-TGAGGGTTCTTTGTGCTGA-3'

質控下游引物(3R)，SEQ ID No.8：5'-AGGAAGGGCTTTGTGAGG-3'質控探針(3P)，SEQ ID No.9：5'-CATCCCTCACCCCTTCAATGCCC-3'。

作為內部質控的質控引物對進行PCR擴增時，其擴增序列的大小為158bp，將擴增序列作為內部質控陽性對照物，即包含如SEQ ID No.12所示序列。

SEQ ID No.12：

5’-TGAGGGTTCTTTGTGCTGAGCGGGGCCCTGCAGGGGAGAAAGGCCCATCCCTCACCCCTTCAATGCCCCCACTGTGGCATCCCTGGGACTGGGGAGGCTGATGGGGAAGGTTGAGCCTTTACTAGCTGGATCTCCCAGTTCCTCACAAAGCCCTTCCT-3’。

實施例2用于檢測HLA-B27基因位點的試劑盒

用于快速檢測HLA-B27基因位點的實時熒光PCR試劑盒包括以下成分：

用于HLA-B*27:04基因檢測的PCR引物對1和檢測探針1：

HLA-B*27:04基因擴增上游引物1：核苷酸序列如SEQ ID No.1所示；

HLA-B*27:04基因擴增下游引物1：核苷酸序列如SEQ ID No.2所示；

HLA-B*27:04基因檢測探針1：核苷酸序列如SEQ ID No.3所示；

用于HLA-B*27:05基因檢測的PCR引物對2及檢測探針2：

HLA-B*27:05基因擴增上游引物2：核苷酸序列如SEQ ID No.4所示；

HLA-B*27:05基因擴增下游引物2：核苷酸序列如SEQ ID No.5所示；

HLA-B*27:05基因檢測探針2：核苷酸序列如SEQ ID No.6所示；

其中，檢測探針1和檢測探針2的5＇端連接熒光基團，3＇端連接淬滅基團。

為了避免漏檢，錯檢，還包括：作為內部質控的質控引物對、質控探針，其中，質控引物對的核苷酸序列如SEQ ID No.7和SEQ ID No.8所示，質控探針的核苷酸序列如SEQ ID No.9所示，該質控探針的5＇端連接有不同于所述檢測探針1和2的熒光基團，3＇端連接有不同于所述檢測探針1和2的淬滅基團。

在本發明具體實施過程中，為有效監控PCR反應體系是否正常，本發明還分別提供了針對HLA-B*27:04和HLA-B*27:05基因檢測的陽性對照物。HLA-B*27:04陽性對照物由人工合成的含SEQ ID No.10序列的重組質粒DNA與人工合成含SEQ ID No.12序列重組質粒DNA按1：1等拷貝混合所得的DNA混合物；HLA-B*27:05陽性對照物由人工合成的含SEQ ID No.11序列的重組質粒DNA與人工合成含SEQ ID No.12序列重組質粒DNA按1：1等拷貝混合所得的DNA混合物。

為了防止反應體系在PCR擴增過程中揮發，影響檢測效果，試劑盒還包括有礦物油。

為了便于反應體系的配置，試劑盒還包括10×PCR緩沖液(含Mg²⁺)；熱啟動DNA聚合酶、dNTPs、陰性對照物：ddH₂O。其中熱啟動DNA聚合酶可采用TaKaRa Ex Taq HS，10×PCR buffer(Mg²⁺Plus)采用TaKaRa寶生物工程(大連)有限公司，也可應用市場上其他公司的緩沖液與DNA聚合酶。

實施例3采用實時熒光PCR檢測HLA-B27基因位點的方法

根據實施例1篩選設計的HLA-B*27:04基因檢測引物對及檢測探針、HLA-B*27:05基因檢測引物對及檢測探針進行合成，可在檢測探針的5＇端連接熒光基團，3＇端連接淬滅基團，其中，熒光基團為FAM、JOE、CY3、HEX、VIC中任意一種，所述淬滅基團為MGB、BHQ1、TAMRA、BHQ2中任意一種。

其中，在本實施例中探針合成時，探針與熒光和淬滅基團相連，檢測探針1和2的熒光-淬滅基團為優選為FAM-MGB，質控探針的熒光-淬滅基團優選為JOE-TAMRA。當然，檢測探針1、2和質控探針采用其它熒光-淬滅基團組合也同樣適用，比如，HEX-BHQ1、HEX-TAMRA、FAM-TAMRA、FAM-BHQ1、CY3-BHQ1、CY3-BHQ2等，檢測時選擇相應的熒光檢測模式。

應用本發明設計的引物對和檢測探針，對檢測樣品的DNA模板，進行HLA-B*27:04、HLA-B*27:05基因的實時熒光PCR擴增檢測，采用HLA-B*27:04和HLA-B*27:05的反應體系，均用25μL反應體系，反應體系如表1配置，進行實時熒光PCR擴增；

表1熒光定量PCR反應體系組成

將PCR管放入熒光定量PCR儀器中，進行熒光PCR擴增檢測。PCR擴增反應條件為：

第一階段：95℃變性10min；

第二階段：94℃30s，58℃30s，10個循環；

第三階段:94℃30s，60℃30s(該階段收集熒光信號)，30個循環。

PCR程序運行結束后，選擇對應熒光基團的熒光檢測模式，基線調整取3～15個循環的熒光信號，以閾值線剛好超過正常陰性對照的最高點設定閾值線。

對樣品進行檢測時，避免漏檢，如避免有的反應孔中未加檢測樣本的情況出現，在每個反應孔中設置有內部質控，應當注意的是檢測探針與質控探針熒光基團標記為不同檢測模式的熒光基團。具體的實時熒光PCR擴增反應體系組成按表1配置。

結果分析時，對內部質控分析：根據ROC分析方法將內控信號Ct值的分界點定為25。每個樣品內控JOE信號應有典型的“S”型擴增曲線，且Ct值<25；若Ct≥25，說明反應體系中DNA模板上樣量不足或待檢樣本DNA中可能存在PCR抑制劑，建議適量增加DNA上樣量或重新提取樣品DNA；若內控無Ct值，可能存在待檢樣本DNA漏加等。

為了避免反應體系受到污染或體系成分錯加，而導致檢測結果不準確，還設有陽性對照和陰性對照，所述陽性對照為以含有如SEQ ID No.10和SEQ ID No.12核苷酸序列所示的HLA-B*27:04陽性對照物、含SEQ ID No.11和SEQ ID No.12核苷酸序列所示的HLA-B*27:05陽性對照物為模板，進行所述反應體系1和反應體系2的實時熒光PCR擴增；所述陰性對照為以ddH₂O為模板，進行所述反應體系1和反應體系2的實時熒光PCR擴增；對應的檢測結果，在步驟(4)中，所述陽性對照的反應體系1和反應體系2的FAM均有典型的“S”型擴增曲線，FAM信號的Ct值Ct≤26，且其JOE信號有典型的“S”型擴增曲線，JOE信號的Ct值<25，符合要求；所述陰性對照的反應體系的FAM、JOE均沒有擴增曲線或Ct值，符合要求；否則，應重新進行體系配置，重新檢測。

上述實時熒光PCR反應可使用的儀器包括ABI實時PCR系統(例如7300、7500、7900等)；BioRad實時PCR檢測系統、LightCycler480實時熒光定量PCR儀。

實施例4：檢測實施例2中制備的試劑盒的靈敏度

1、DNA梯度稀釋、上樣

選取經Sanger測序驗證后的HLA-B*27:04和HLA-B*27:05陽性基因型DNA樣本，經微量紫外分光光度計測量濃度和純度后，用雙蒸水分別10倍等梯度稀釋到10ng/μL、1ng/μL、0.1ng/μL、0.01ng/μL。

參照實例3方法中配置PCR反應液并加樣，設定PCR反應程序，在ABI7500熒光定量PCR儀上運行程序。

2、靈敏度分析

自動設置閾值線獲取各濃度樣本Ct值。10ng/μL、1ng/μL、0.1ng/μL的DNA上樣濃度均獲得了該位點陽性檢測結果，而0.01ng/μL的DNA上樣濃度由于Ct值超過陰陽性結果界定值，而判別為陰性結果。HLA-B*27:04反應體系靈敏度檢測和HLA-B*27:05反應體系靈敏度檢測的擴增圖如圖1和圖2所示，因此，本發明的試劑盒能準確檢測低至0.1ng/μL的DNA樣本。

實施例5：用本發明制備的試劑盒檢測臨床樣本

1、從人外周血或口腔拭子中抽提DNA樣本

從自愿者獲得20例人外周血樣本，使用天根生化科技有限公司相關DNA提取試劑盒獲取DNA樣本(詳細操作細節見相關說明書)。DNA抽提完成后，用微量紫外分光光度計檢測其濃度和純度，樣本DNA濃度不小于20ng/μL，且OD260/280在1.7～1.8之間。樣本DNA應于-20℃長期保存，避免反復凍融。

2、PCR反應液配制

按實施例3檢測方法中分別配制人HLA-B*27:04、HLA-B*27:05檢測體系PCR反應液(PCR反應體系見表1)，其中PCR反應液包括引物、探針、熱啟動DNA聚合酶、dNTPs混合液、PCR緩沖液(含Mg²⁺)、ddH2O。反應液配好后分裝于PCR管中，分別向以上2個檢測體系管中加入2.0μL同一樣本DNA模板。每次實驗均應安排陽性對照孔和陰性對照(NTC)孔。加好樣品后蓋好管蓋，在孔板離心機上短暫離心數秒。

3、熒光PCR檢測

將PCR管放入熒光定量PCR儀器中，進行熒光PCR擴增檢測。PCR擴增反應條件為：

第一階段：95℃變性10min；

第二階段：94℃30s，58℃30s，10個循環；

第三階段:94℃30s，60℃30s(該階段收集FAM和JOE信號)，30個循環。

PCR程序運行結束后，使用儀器自動設置的基線和閾值線獲取各樣本Ct值。

4、結果判讀

NTC分析：正常情況下，NTC孔應無擴增曲線或Ct值；若NTC孔有Ct值，說明在實驗過程中可能存在污染，應排除污染來源后重新開始新的實驗。

內控分析：每個樣品內控JOE信號應有典型的“S”型擴增曲線，且Ct值<25；若Ct≥25，說明反應體系中DNA模板上樣量不足或待檢樣本DNA中可能存在PCR抑制劑，應適量增加DNA上樣量或重新提取樣品DNA；若內控無Ct值，可能存在待檢樣本DNA漏加等。

樣本基因型分析：本試劑盒包含2個檢測體系，能分別檢測HLA-B*27:04、HLA-B*27:05基因型，利用這2個檢測體系對同一樣本DNA進行檢測，根據FAM信號Ct值對樣本HLA-B27基因型進行判斷。根據ROC分析方法將FAM信號Ct值分界點定為26。在以上2孔檢測體系中，當至少有一孔體PCR反應體系FAM信號呈現典型的“S”型擴增曲線，且Ct值≤26時，該待檢DNA樣本才為HLA-B27陽性，否則，為HLA-B27陰性。具體可見表2樣本基因型判斷標準。

擴增圖的結果，如圖3為HLA-B*27:04陽性樣本擴增曲線，如圖4為HLA-B*27:05陽性樣本擴增曲線，如圖5為HLA-B*27:04/HLA-B*27:05雜合型樣本擴增曲線，如圖6為HLA-B*27陰性樣本擴增曲線。

表2樣本基因型判斷標準

將提取的20例人外周血樣本基因組DNA，分別用本發明試劑盒和Sanger測序法對樣本HLA-B27基因進行檢測，其中測序送由武漢擎科生物技術有限公司完成。檢測結果見表3，本試劑盒檢測結果與“金標準”Sanger測序法相比較，符合率100％。結果說明本試劑盒檢測準確性高、操作簡單、耗時短。

表3本試劑盒檢測結果與測序法比較

以上所述實施例僅是為充分說明本發明而所舉的較佳的實施例，本發明的保護范圍不限于此。本技術領域的技術人員在本發明基礎上所作的等同替代或變換，均在本發明的保護范圍之內。

SEQUENCE LISTING

<110> 武漢海吉力生物科技有限公司

<120> 用于檢測HLA-B27基因的檢測試劑盒和方法

<130>

<160> 12

<170> PatentIn version 3.5

<210> 1

<211> 19

<212> DNA

<213> 人工序列

<400> 1

gcaaggccaa ggcacagac 19

<210> 2

<211> 18

<212> DNA

<213> 人工序列

<400> 2

ctctcagctg ctccggct 18

<210> 3

<211> 20

<212> DNA

<213> 人工序列

<400> 3

cgagagagcc tgcggaccct 20

<210> 4

<211> 19

<212> DNA

<213> 人工序列

<400> 4

ggagtattgg gaccgggag 19

<210> 5

<211> 18

<212> DNA

<213> 人工序列

<400> 5

ctctcagctg ctccggca 18

<210> 6

<211> 20

<212> DNA

<213> 人工序列

<400> 6

cgagaggacc tgcggaccct 20

<210> 7

<211> 19

<212> DNA

<213> 人工序列

<400> 7

tgagggttct ttgtgctga 19

<210> 8

<211> 18

<212> DNA

<213> 人工序列

<400> 8

aggaagggct ttgtgagg 18

<210> 9

<211> 23

<212> DNA

<213> 人工序列

<400> 9

catccctcac cccttcaatg ccc 23

<210> 10

<211> 273

<212> DNA

<213> 人工序列

<400> 10

gcaaggccaa ggcacagact gaccgagaga gcctgcggac cctgctccgc tactacaacc 60

agagcgaggc cgggtctcac accctccaga atatgtatgg ctgcgacgtg gggccggacg 120

ggcgcctcct ccgcgggtac caccaggacg cctacgacgg caaggattac atcgccctga 180

acgaggacct gagctcctgg accgccgcgg acacggcggc tcagatcacc cagcgcaagt 240

gggaggcggc ccgtgaggcg gagcagctga gag 273

<210> 11

<211> 302

<212> DNA

<213> 人工序列

<400> 11

ggagtattgg gaccgggaga cacagatctg caaggccaag gcacagactg accgagagga 60

cctgcggacc ctgctccgct actacaacca gagcgaggcc gggtctcaca ccctccagaa 120

tatgtatggc tgcgacgtgg ggccggacgg gcgcctcctc cgcgggtacc accaggacgc 180

ctacgacggc aaggattaca tcgccctgaa cgaggacctg agctcctgga ccgccgcgga 240

cacggcggct cagatcaccc agcgcaagtg ggaggcggcc cgtgtggcgg agcagctgag 300

ag 302

<210> 12

<211> 158

<212> DNA

<213> 人工序列

<400> 12

tgagggttct ttgtgctgag cggggccctg caggggagaa aggcccatcc ctcacccctt 60

caatgccccc actgtggcat ccctgggact ggggaggctg atggggaagg ttgagccttt 120

actagctgga tctcccagtt cctcacaaag cccttcct 158