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一種制備蜂毒肽的方法與流程

文檔序號:11503751閱讀:337來源:國知局

本發明涉及一種制備蜂毒肽的方法,屬于生物技術領域。



背景技術:

蜂毒是工蜂毒腺分泌的一種具有芳香氣味的透明液體,主要由多肽類、活性酶類、非肽類物質組成,蛋白質多肽類物質是蜂毒中的主要成分,約占蜂毒的70%-80%。蜂毒肽是由26個氨基酸殘基組成的多肽,分子量為2840da,約占蜂毒干重的50%,其一級結構氨基酸殘基序列為nh2-gly-ile-gly-ala-val-leu-lys-val-leu-thr-thr-glu-leu-pro-ala-leu-ile-ser-trp-ile-lys-arg-lys-arg-glu-gln-cooh。蜂毒肽具有抗炎、抑菌、抗癌、抗輻射、抑制血小板凝集等作用,可有效地治療肩周炎、風濕性關節炎、類風濕性關節炎等多種疾病,在醫藥領域具有一定的應用。

蜂毒肽是從蜂毒中分離純化得來的,具有生物活性高、不污染環境等特點,可以研制開發出機體免疫調節劑等產品,具有很大的市場開發前景,因而引起了學術界廣泛的關注。

用溶媒萃取、三柱層析、溶媒萃取與三柱層析相結合等方法制備蜂毒肽,其產品制備過程繁瑣,生產周期較長,有機溶劑使用量大。kreil(kreil,g.structureofmelittinisolatedfromtwospeciesofhoneybees[j].febsletters,1973,33(2):241-244.)報道了溶媒萃取制備蜂毒肽的方法,蜂毒肽得率約為20%(質量分數),純度在60.3%(質量分數),制備方法簡便,提取1g蜂毒肽需要200ml正丁醇,正丁醇的需求量大,造成環境的嚴重污染。劉嶺和楊文超(1.劉嶺,李昌全,黃雪強.蜂毒素的純化方法及體外抗腫瘤作用研究[j].中國生化藥物雜質.2003,24(4):16-172.楊文超,蜂毒肽的分離純化及其抗輻射作用機理研究[d],福建農林大學,2007.)報道了三柱層析法制備蜂毒肽,蜂毒肽得率約為48.67%(質量分數),純度為97.32%(質量分數),純度較高,解決了有機溶劑用量大的問題,但是提取過程復雜,提取時間較長。張文禮和徐彭(1.張文禮,孫井元.蜂毒肽的分離提純方法[p],中國,101089017a.2007-12-19.2.徐彭,歐陽永偉,黃敬耀,張桂英,肖誠,劉波.從蜂毒中分離純化蜂毒肽的實驗研究.中草藥[j].2000,31(12):892-894.)報道了溶媒萃取與層析法相結合制備蜂毒肽,蜂毒肽得率約為47%(質量分數),純度為電泳純,縮短了三柱層析法所需時間,與kreil(kreil,g.structureofmelittinisolatedfromtwospeciesofhoneybees[j].febsletters,1973,33(2):241-244.)的制備方法相比較,減少了正丁醇的使用量,但在提取過程中仍需大量的正丁醇,不利于環境保護。

上述分離純化方法生產工藝復雜,生產周期長,得率低,純度低,且污染嚴重。



技術實現要素:

本發明的目的是為了克服蜂毒肽現有分離純化技術的不足,提供一種快速制備蜂毒肽的方法,該方法所制備的蜂毒肽,得率高,純度高,周期短,能耗低,污染小的制備蜂毒肽的方法。

本發明獲得蜂毒肽的提取率質量分數為49%,純度質量分數為98%。

本發明的一種制備蜂毒肽的方法,步驟如下:

①蜂毒的除雜

將粗蜂毒加入到ph為4.0-5.5的緩沖溶液中,使其濃度為0.5-1.5mg/ml,以2500-3500r/min離心3-7min去除不溶性的雜質,得上清液;

所述粗蜂毒是將蜜蜂蟄刺排出的毒液用蒸餾水溶解,經冷凍干燥所得;

所述緩沖液為醋酸-醋酸鈉緩沖溶液;

所述除雜為除去不溶于緩沖溶液的物質。

②蜂毒肽的分離

將①中所得上清液過葡聚糖凝膠g-25柱,用蒸餾水洗脫,流速控制在25-30ml/h,測定各分離組分的分子量,在葡聚糖凝膠柱下收集分子量為2840da的層析組分經冷凍干燥得固體樣品;

所述葡聚糖凝膠g-25為葡聚糖用英文字母g表示,g反映凝膠的交聯程度、膨脹程度及分布范圍,25為每克凝膠膨脹時吸水2.5克;

所述洗脫為以蒸餾水作為流動相連續通過色譜柱固定相,流動相與固定相作用力比樣品弱,樣品各組分按先后順序從固定相洗出;

所述分子量的測定為根據標準品洗脫保留時間t(min)與其相對分子質量對數值(lgmr)標準曲線回歸方程,標準品為抗菌肽標準品(mr=1422da)、氧化性谷胱甘肽標準品(mr=612da)、還原性谷胱甘肽標準品(mr=307.32da)。

所述da為蜂毒肽分子量的單位;

所述冷凍干燥為將所得組分冷凍至水的冰點以下,并置于高真空(10-40pa)的容器中,通過供熱使物料中的水分直接從固態冰升華為水汽的一種干燥方法。

③蜂毒肽的純化

將②中冷凍干燥所得的固體用2-4倍體積的無水乙醇進行溶解,經2500-3500r/min離心4-6min,沉淀物質即為蜂毒肽。

所述沉淀為不溶于無水乙醇的固體物質。

采用本方法生產蜂毒肽,簡化了蜂毒肽的提取工藝,與現有方法相比生產周期減少1-2天,得率提高1-2%,降低了制備成本,蜂毒肽純度可達到電泳純。

與現有技術相比較,本發明制備蜂毒肽的方法,具有以下顯著特點:

(1)采用葡聚糖凝膠g-25柱,進行分離處理;

(2)本發明獲得蜂毒肽相對于劉嶺、楊文超、張文禮、徐彭(1.劉嶺,李昌全,黃雪強.蜂毒素的純化方法及體外抗腫瘤作用研究.中國生化藥物雜質[j].2003,24(4):16-172.楊文超,蜂毒肽的分離純化及其抗輻射作用機理研究[d],福建農林大學,2007.3.張文禮,孫井元.蜂毒肽的分離提純方法:中國,101089017a[p].2007-12-19.4.徐彭,歐陽永偉,黃敬耀,張桂英,肖誠,劉波.從蜂毒中分離純化蜂毒肽的實驗研究.中草藥[j].2000,31(12):892-894.),得率提高到1-2%,制備時間縮短2-3天。

(3)本發明獲得蜂毒肽的純度達到了電泳純。

實施例1:

①蜂毒的除雜

將粗蜂毒加入到ph為4.75的緩沖溶液中,使其濃度為1.0mg/ml,以3000r/min離心5min去除不溶性的雜質,得上清液;

所述粗蜂毒是將蜜蜂蟄刺排出的毒液用蒸餾水溶解,經冷凍干燥所得;

所述緩沖液為醋酸-醋酸鈉緩沖溶液;

所述除雜為除去不溶于緩沖溶液的物質。

②蜂毒肽的分離

將①中所得上清液過葡聚糖凝膠g-25柱,用蒸餾水洗脫,流速控制在28ml/h,測定各分離組分的分子量,在葡聚糖凝膠柱下收集分子量為2840da的層析組分經冷凍干燥得固體樣品;

所述葡聚糖凝膠g-25為葡聚糖用英文字母g表示,g反映凝膠的交聯程度、膨脹程度及分布范圍,25為每克凝膠膨脹時吸水2.5克;

所述洗脫為以蒸餾水作為流動相連續通過色譜柱固定相,流動相與固定相作用力比樣品弱,樣品各組分按先后順序從固定相洗出;

所述分子量的測定為根據標準品洗脫保留時間t(min)與其相對分子質量對數值(lgmr)標準曲線回歸方程,標準品為抗菌肽標準品(mr=1422da)、氧化性谷胱甘肽標準品(mr=612da)、還原性谷胱甘肽標準品(mr=307.32da)。

所述da為蜂毒肽分子量的單位;

所述冷凍干燥為將所得組分冷凍至水的冰點以下,并置于高真空(10-40pa)的容器中,通過供熱使物料中的水分直接從固態冰升華為水汽的一種干燥方法。

③蜂毒肽的純化

將②中冷凍干燥所得的固體用3倍體積的無水乙醇進行溶解,經3000r/min離心5min,沉淀物質即為蜂毒肽。

所述沉淀為不溶于無水乙醇的固體物質。

當前發明獲得蜂毒肽的提取率質量分數為49%,純度質量分數為98%。

實施例2:

①蜂毒的除雜

將粗蜂毒加入到ph為5.25的緩沖溶液中,1.5mg/ml,以3200r/min離心6min去除不溶性的雜質,得上清液;

所述粗蜂毒是將蜜蜂蟄刺排出的毒液用蒸餾水溶解,經冷凍干燥所得;

所述緩沖液為醋酸-醋酸鈉緩沖溶液;

所述除雜為除去不溶于緩沖溶液的物質。

②蜂毒肽的分離

將①中所得上清液過葡聚糖凝膠g-25柱,用蒸餾水洗脫,流速控制在30ml/h,測定各分離組分的分子量,在葡聚糖凝膠柱下收集分子量為2840da的層析組分經冷凍干燥得固體樣品;

所述葡聚糖凝膠g-25為葡聚糖用英文字母g表示,g反映凝膠的交聯程度、膨脹程度及分布范圍,25為每克凝膠膨脹時吸水2.5克;

所述洗脫為以蒸餾水作為流動相連續通過色譜柱固定相,流動相與固定相作用力比樣品弱,樣品各組分按先后順序從固定相洗出;

所述分子量的測定為根據標準品洗脫保留時間t(min)與其相對分子質量對數值(lgmr)標準曲線回歸方程,標準品為抗菌肽標準品(mr=1422da)、氧化性谷胱甘肽標準品(mr=612da)、還原性谷胱甘肽標準品(mr=307.32da)。

所述da為蜂毒肽分子量的單位;

所述冷凍干燥為將所得組分冷凍至水的冰點以下,并置于高真空(10-40pa)的容器中,通過供熱使物料中的水分直接從固態冰升華為水汽的一種干燥方法。

③蜂毒肽的純化

將②中冷凍干燥所得的固體用4倍體積的無水乙醇進行溶解,經3200r/min離心6min,沉淀物質即為蜂毒肽。

所述沉淀為不溶于無水乙醇的固體物質。

當前發明獲得蜂毒肽的提取率質量分數為48.65%,純度質量分數為97.21%。

實施例3:

①蜂毒的除雜

將粗蜂毒加入到ph為4.5的緩沖溶液中,0.5mg/ml,以2800r/min離心4min去除不溶性的雜質,得上清液;

所述粗蜂毒是將蜜蜂蟄刺排出的毒液用蒸餾水溶解,經冷凍干燥所得;

所述緩沖液為醋酸-醋酸鈉緩沖溶液;

所述除雜為除去不溶于緩沖溶液的物質。

②蜂毒肽的分離

將①中所得上清液過葡聚糖凝膠g-25柱,用蒸餾水洗脫,流速控制在26ml/h,測定各分離組分的分子量,在葡聚糖凝膠柱下收集分子量為2840da的層析組分經冷凍干燥得固體樣品;

所述葡聚糖凝膠g-25為葡聚糖用英文字母g表示,g反映凝膠的交聯程度、膨脹程度及分布范圍,25為每克凝膠膨脹時吸水2.5克;

所述洗脫為以蒸餾水作為流動相連續通過色譜柱固定相,流動相與固定相作用力比樣品弱,樣品各組分按先后順序從固定相洗出;

所述分子量的測定為根據標準品洗脫保留時間t(min)與其相對分子質量對數值(lgmr)標準曲線回歸方程,標準品為抗菌肽標準品(mr=1422da)、氧化性谷胱甘肽標準品(mr=612da)、還原性谷胱甘肽標準品(mr=307.32da)。

所述da為蜂毒肽分子量的單位;

所述冷凍干燥為將所得組分冷凍至水的冰點以下,并置于高真空(10-40pa)的容器中,通過供熱使物料中的水分直接從固態冰升華為水汽的一種干燥方法。

③蜂毒肽的純化

將②中冷凍干燥所得的固體用2倍體積的無水乙醇進行溶解,經2800r/min離心4min,沉淀物質即為蜂毒肽。

所述沉淀為不溶于無水乙醇的固體物質。

當前發明獲得蜂毒肽的提取率質量分數為48.76%,純度質量分數為97.64%。

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