<listing id="vjp15"></listing><menuitem id="vjp15"></menuitem><var id="vjp15"></var><cite id="vjp15"></cite>
<var id="vjp15"></var><cite id="vjp15"><video id="vjp15"><menuitem id="vjp15"></menuitem></video></cite>
<cite id="vjp15"></cite>
<var id="vjp15"><strike id="vjp15"><listing id="vjp15"></listing></strike></var>
<var id="vjp15"><strike id="vjp15"><listing id="vjp15"></listing></strike></var>
<menuitem id="vjp15"><strike id="vjp15"></strike></menuitem>
<cite id="vjp15"></cite>
<var id="vjp15"><strike id="vjp15"></strike></var>
<var id="vjp15"></var>
<var id="vjp15"></var>
<var id="vjp15"><video id="vjp15"><thead id="vjp15"></thead></video></var>
<menuitem id="vjp15"></menuitem><cite id="vjp15"><video id="vjp15"></video></cite>
<var id="vjp15"></var><cite id="vjp15"><video id="vjp15"><thead id="vjp15"></thead></video></cite>
<var id="vjp15"></var>
<var id="vjp15"></var>
<menuitem id="vjp15"><span id="vjp15"><thead id="vjp15"></thead></span></menuitem>
<cite id="vjp15"><video id="vjp15"></video></cite>
<menuitem id="vjp15"></menuitem>

苯丙素類化合物及其藥學上可接受的鹽和藥物組合物的制作方法_3

文檔序號:9881032閱讀:來源:國知局
積比為28:72,洗脫18個柱體積,按每3個柱體積收集一個流分的洗脫液,按順序 收集 6 個流分,分別命名為:MM-11,MM-12,MM-13,MM-14,MM-15,MM-16備用;
[0087] S4.將步驟S3中的收集到的流分MM-13用制備液相分離,制備液相色譜柱為:YMC, 2 Omm* 2 5 Omm,流速:1 Om 1 /m i η,流動相為甲醇-水-乙酸系統,甲醇:水:乙酸的體積比為10: 90:0.01,按出峰順序收集洗脫液,共收集4個流分,分別命名為MM-131,MM-13 2,MM-133,ΜΜ-134,備用;
[0088] S5.將步驟S4中收集到的流分ΜΜ-132用制備液相純化,制備液相色譜柱為:YMC, 20mm*250mm,流速:5ml /min,流動相為甲醇-水-乙酸系統,甲醇:水:乙酸的體積比為15:85: 0.01,收集洗脫液,重結晶后得到所述苯丙素類化合物。
[0089] 將實施例1至實施例5制備得到的化合物進行質譜、核磁共振氫譜、核磁共振碳譜 的檢測,結果證明所得化合物為:3-羥基-4-甲氧基-5-葡萄糖基-9,9-二甲基苯丙醇。其結 構式如式(I)所示:
[0090]
[0091]其質譜、核磁共振氫譜、核磁共振碳譜的譜圖數據如下:
[0092] HR-ES頂S顯示[M+Na]+為m/z 411.1713,結合核磁特征,可得分子式為&8!128〇9,不 飽和度為5。
[0093] iH-NMRWOOMHz.CDsOD) :6.97((1,1H),6.29((1, lH),4.89(d,lH),3.80(s,3H),3.56 (m,2H),3.12-3.89(5H,glc-H),3.03(m,2H),1.34(s,3H),1.18(s,3H)。
[0094] 13C-NMR(150MHz,CD30D): 158.2(C-5),155.6(C-4),131.4(C-3),130.0(C-2), 129.5(C-1),117.5(C-6),102.2(C-1'),61.0-72.4(C2'-6'),68.7(C-9),58.1(-OCH3), 48.5(C-7),43.9(C-8),27.8(-CH 3),21.0(-CH3)。
[0095] 實施例6苯丙素類化合物鹽的制備
[0096] 苯丙素類化合物鹽酸鹽的制備:
[0097]攪拌下將該苯丙素類化合物甲醇溶液中滴加飽和鹽酸至pH值2-3,攪拌下滴加乙 腈,抽濾,干燥得到白色粉末固體,即為苯丙素類化合物的鹽酸鹽。
[0098]苯丙素類化合物磺酸鹽的制備:
[0099] 在含有該苯丙素類化合物、溶劑、磺酸、中性油和促進劑的反應體系中加入堿金屬 的氫氧化物,加入溶劑、低級醇和助促進劑,通入二氧化碳,分離得到白色粉末固體,即為苯 丙素類化合物的磺酸鹽。
[0100] 苯丙素類化合物鉀鹽或鈉鹽的制備:
[0101] 將溶于乙醇中的Κ0Η或NaOH加入該苯丙素類化合物中,攪拌下加熱回流反應,冷制 室溫,攪拌下滴加乙腈,抽濾,干燥得白色固體,即為該苯丙素類化合物的鉀鹽或鈉鹽。
[0102] 苯丙素類化合物銨鹽的制備:
[0103] 攪拌下將該苯丙素類化合物甲醇溶液中滴加飽和氨水至pH值9-11,攪拌下滴加乙 腈,抽濾,干燥得到白色固體,即為苯丙素類化合物的銨鹽。
[0104] 上述苯丙素類化合物鹽的譜圖數據:
[0105] 苯丙素類化合物鹽酸鹽:ESIMS顯示m/z 424.67,核磁特征1!1-匪1?(60(^取, CD30D):6.40(d,1H),6·19(d,1H),5.09((1,lH),3.90(s,3H),3.34(m,2H),3.13(m,2H),1.44 (s,3H),1.28(s,3H)。
[0106] 苯丙素類化合物磺酸鹽:ESIMS顯示為m/z 452.17,核磁特征1H-NMR(600MHz, CD30D):6.28(d,lH),6.25(d,lH),4.87(d,lH),3.84(s,3H),3.51(m,2H),3.00(m,2H),1.24 (s,3H),l.ll(s,3H)〇
[0107] 苯丙素類化合物鉀鹽或鈉鹽:
[0108] 鉀鹽:ESMS顯示m/z 426 · 87,核磁特征1H-NMR(600MHz ,CD30D): 6 · 23(d, 1H),6 · 20 (d,lH),4.41(d,lH),3.57(s,3H),3.41(m,2H),3.01(m,2H),1.15(s,3H),1.02(s,3H)〇
[0109] 鈉鹽:ESMS顯示m/z 411 · 17,核磁特征1H-NMR(600MHz , CD30D): 6 · 25 (d, 1H), 6 · 21 (d,lH),4.47(d,lH),3.58(s,3H),3.44(m,2H),3.01(m,2H),1.17(s,3H),1.08(s,3H)。
[0110] 苯丙素類化合物銨鹽:ESMS顯示m/z 403.47,核磁特征1H-NMR(600MHz,CD30D): 6.22(d,lH),6.21(d,lH),4.97(d,lH),3.80(s,3H),3.51(m,2H),3.03(m,2H),1.44(s,3H), 1.38(s,3H)〇
[0111] 上述苯丙素類化合物鹽的結構式如式(IV)~式(VI)所示。
[0112]
[0113]
[0114] 其中,式(IV)為制備得到的苯丙素類化合物鹽酸鹽,式(V )為制備得到的苯丙素 類化合物的其中一種磺酸鹽,式(VI)為制備得到的苯丙素類化合物的其中一種鉀鹽,式 (νπ)為制備得到的苯丙素類化合物的其中一種鈉鹽,式(VI)為制備得到的苯丙素類化合物 的其中一種銨鹽。
[0115] 實驗例7應用試驗
[0116] 本發明所述化合物以及鹽對LPS誘導的RAW 264.7巨噬細胞氧化應激與炎癥的影 響。(為了實驗過程中記錄方便,以下將本發明所述的苯丙素類化合物標號為:藥物MM-132, 即本發明中所述的藥物MM-132即是指本發明式(I)所示苯丙素類化合物或其藥學上可接受 的鹽。)
[0117] 1材料與方法
[0118] 1.1藥品及儀器
[0119] 脂多糖(11卩〇卩〇1}^&(^]1&1^(16,1^:)3),]\11'1'購自3181]1&公司;小鼠巨卩策細胞1^¥ 264.7 購自湘雅細胞庫;PBS; DMEM高糖培養基、胎牛血清、青霉素與鏈霉素;全自動酶標儀;恒溫 C02培養箱。
[0120] 小鼠白介素 l-f3(IL-1-f3)ELISA檢測試劑盒,批號:2014/06(96T);小鼠白介素6 (IL-6)ELISA檢測試劑盒,批號:2014/06(96T);小鼠腫瘤壞死因子-a(TNF-a)ELISA檢測試 劑盒,批號:2014/06(96T);小鼠一氧化氮(NO)ELISA檢測試劑盒,批號:2014/10(96T);小鼠 羥基自由基(OH)ELISA檢測試劑盒,批號:2014/10(96T)。
[0121] 1.2藥物制備
[0122] 首先用少量DMS0溶解,然后用DMEM稀釋至一定的濃度,使終濃度中DMS0含量少于 1%0 〇
[0123] 1.3細胞培養
[0124] 小鼠巨噬細胞Raw 264.7培養于含10%熱滅活(56°(:,3〇1^11)的胎牛血清卬83)、 10U/mL青霉素鈉、100yg/mL鏈霉素的DMEM培養基中,37°C、5 % C02恒溫培養箱中孵育生長。
[0125] 1.4細胞活力測定
[0126] 細胞活力通過MTT法來測定。將細胞制成細胞懸液接種于96孔板(1 X 104個/孔)孵 育24h,再同步化24h,然后將不同濃度的藥物作用于細胞2h,然后再加入LPS(30yg/mL)刺激 24h,吸棄原培養基,每孔加入100yL的MTT(0.5mg/mL)繼續孵育4h,吸棄培養基,每孔加入 150yL的DMS0,搖床振搖10min,在490nm處測定吸光度。
[0127] 1.5 N0含量測定
[0128] Raw 264.7細胞接種于96孔板24h,再同步化24h,然后將不同濃度的藥物作用于細 胞2h,然后再加入LPS( 30yg/mL)刺激24h,最后收集上清液,并于lOOOOrpm離心5min,分裝上 清并置于_80°C保存備用。通過小鼠 N0試劑盒測定N0含量。
[0129] 1 · 6炎癥因子TNF-α,IL-Ιβ,IL-6測量
[0130] 樣品取1.5制備好的樣品用于后續炎癥因子測定。細胞產生TNF-a,IL-lf3,IL_6的 量通過小鼠 TNF-a,IL-Ιβ,IL-6試劑盒來測定。
[0131] 1.7 0H含量測定
[0132] 樣品取1.5制備好的樣品用于0H因子測定。通過0H試劑盒測定含量。
[0133] 1.8統計分析
[0134] 采用SPSS17.0軟件,實驗數據以(x±s表示;所得數據通過用單因素方差分析,方 差齊性用LSD檢驗,方差不齊用Dunnett T3檢驗。
[0135] 2實驗結果
[0136] 2.1細胞活力
[0137] 藥物對細胞活力的影響通過MTT法來評價。如圖3所示,藥物MM-132在1.50-13.50μ g/mL濃度范圍內對Raw 264.7細胞活力沒有顯著影響;因
當前第3頁1 2 3 4 
網友詢問留言 已有0條留言
  • 還沒有人留言評論。精彩留言會獲得點贊!
1
韩国伦理电影