<listing id="vjp15"></listing><menuitem id="vjp15"></menuitem><var id="vjp15"></var><cite id="vjp15"></cite>
<var id="vjp15"></var><cite id="vjp15"><video id="vjp15"><menuitem id="vjp15"></menuitem></video></cite>
<cite id="vjp15"></cite>
<var id="vjp15"><strike id="vjp15"><listing id="vjp15"></listing></strike></var>
<var id="vjp15"><strike id="vjp15"><listing id="vjp15"></listing></strike></var>
<menuitem id="vjp15"><strike id="vjp15"></strike></menuitem>
<cite id="vjp15"></cite>
<var id="vjp15"><strike id="vjp15"></strike></var>
<var id="vjp15"></var>
<var id="vjp15"></var>
<var id="vjp15"><video id="vjp15"><thead id="vjp15"></thead></video></var>
<menuitem id="vjp15"></menuitem><cite id="vjp15"><video id="vjp15"></video></cite>
<var id="vjp15"></var><cite id="vjp15"><video id="vjp15"><thead id="vjp15"></thead></video></cite>
<var id="vjp15"></var>
<var id="vjp15"></var>
<menuitem id="vjp15"><span id="vjp15"><thead id="vjp15"></thead></span></menuitem>
<cite id="vjp15"><video id="vjp15"></video></cite>
<menuitem id="vjp15"></menuitem>

一種增加免疫細胞得率的方法

文檔序號:9702971閱讀:1237來源:國知局
一種增加免疫細胞得率的方法
【技術領域】
[0001 ]本發明涉及生物醫學技術領域,具體涉及一種增加免疫細胞得率的方法。
【背景技術】
[0002] 免疫細胞具有自然殺傷和自我保護的特征,其中淋巴細胞具有免疫調節和自我復 制等特點,針對病毒、細菌、真菌感染的治療均起到關鍵的作用,應用免疫細胞進行的免疫 細胞療法在癌癥治療中具有很大的臨床應用價值。免疫細胞療法目前主要包括細胞因子誘 導的殺傷細胞(CIK)療法、樹突狀細胞(DC)療法、DC-CIK細胞療法、自然殺傷細胞(NK)療法、 DC-T細胞療法等。
[0003] 在健康人體的血液中含有豐富的免疫細胞,隨著老齡化、亞健康、患上各種疾病等 原因,血液中免疫細胞的數量會明顯呈下降趨勢,增殖分化能力降低;而異體的免疫細胞移 植則可能引起患者體內的免疫排斥反應;如何增加免疫細胞的得率直接影響了免疫細胞療 法的臨床應用,現有技術中一般通過以下兩個方面獲得免疫細胞,一是直接從血液中提取 免疫細胞,二是考慮通過后期誘導分化擴增免疫細胞。
[0004] 目前關于血液免疫細胞的分離和擴增方法不一,且大多步驟復雜,獲得較多數量 血液免疫細胞也存在一定難度,在患者患病時采集血液也給患者造成二次傷害,并且減少 身體的免疫細胞,降低抵抗力,所以在健康時采集的血液如何高效簡單的分離更多的免疫 細胞、保存和擴增成為免疫細胞治療必須解決的問題,現有技術中已經存在從血液中分離 免疫細胞的方法,但是該類免疫細胞分離過程中,對于細胞在凍存過程中的保護有限,細胞 在凍存過程中容易受到損傷,在培養過程中的擴增數量也有十分有限。

【發明內容】

[0005] 本發明針對現有技術中存在的問題,提供一種增加免疫細胞得率的方法,通過保 存健康時的細胞,并在凍存過程中有效的保持細胞的活性,在擴增培養中能得到較高倍數 的擴增和較高純度的細胞,從而增加了免疫細胞的得率。
[0006] 本發明通過以下技術方案實現該目的:
[0007] -種增加免疫細胞得率的方法,包括以下步驟:
[0008] 1)采集人外周血,用生理鹽水稀釋,制得血液稀釋液,外周血與生理鹽水的體積比 為1:5~5:1;
[0009] 2)將Ficoll分離液加入sepmate離心管的底部,將步驟1)中的血液稀釋液緩慢的 加到Ficoll分離液上層,血液稀釋液與Ficoll分離液的體積比為1:5~5:1,離心機400~ 1000g離心10~30min,分離外周血免疫細胞,洗滌二次離心收集外周血單個核細胞;
[0010] 3)免疫細胞的凍存:將步驟2)收集的免疫細胞利用人血白蛋白重懸,向制得的細 胞懸液中加入細胞凍存液,搖勻分裝至凍存管后移至程序降溫儀,進行程序降溫,降至-80 °C后,轉移至液氮罐;所述細胞凍存液由茶多酚、人血白蛋白和DMS0組成,人血白蛋白與 DMS0的體積比為2~8:1;
[0011] 4)免疫細胞的復蘇:將步驟3)凍存的凍存管從液氮罐匯中取出,水浴溶解后將凍 存管中的細胞懸液轉移至X-VIV015培養基中,細胞懸液與X-VIV015培養基的體積比為1:4 ~10,混勻后洗滌離心,將洗滌離心后的PBMC用X-VIV015培養基重懸,接種于培養瓶中;
[0012] 5)免疫細胞的誘導擴增培養:對步驟4)的培養瓶中的細胞懸液進行誘導擴增培 養,在誘導擴增培養的過程中加入了海帶多糖。
[0013] 其中,步驟3)的細胞凍存液的配制方法:將茶多酚加入人血白蛋白中,茶多酚的終 濃度為1~10mg/mL,按體積比人血白蛋白:DMS0 = 2~8:1,緩慢的加入DMS0,得到細胞凍存 液。
[0014] 其中,步驟3)的凍存過程具體為:將步驟2)收集的免疫細胞利用人血白蛋白重懸, 再將上述細胞凍存液緩慢加入到細胞懸液中,細胞凍存液中人血白蛋白與DMS0的體積比為 5~17:1,茶多酸的終濃度為1~10mg/mL。
[0015] 作為優選的,步驟3)的凍存管中免疫細胞的密度為2~6X106個/mL。
[0016] 其中,步驟4)的凍存管從液氮罐匯中取出后,置于37°C恒溫水浴,2min內完成溶 解,轉移至X-VIV015培養基中,混勻后200~600g離心5~15min。
[0017] 作為優選的,步驟4)的培養瓶中接種密度為1X106個/mL。
[0018] 其中,NK細胞的誘導擴增培養方法:
[0019] 6)向步驟4)的免疫細胞懸液中全量添加細胞生長因子IL-2JL-15JL-21、海帶多 糖,其終濃度分別為 200 ~1000U/mL、200 ~1000U/mL、200 ~1000U/mL、15 ~120ug/mL,按總 體積5~20 %的量添加胎牛血清;
[0020] 7)定期補充新鮮的X-VIV015培養基和11^-2、幾-15、幾-21、海帶多糖、胎牛血清,使 得免疫細胞的密度不大于3X106個/mL;
[0021] 8)連續培養12~16天。
[0022]其中,CIK細胞的誘導擴增培養方法:
[0023] 9)向步驟4)的免疫細胞懸液中全量添加細胞因子IFN-γ,使終濃度為200~ 10001]/11^,按總體積5~20%的量添加胎牛血清;
[0024] 10)第二天全量添加細胞生長因子IL-2、海帶多糖,使終濃度分別為200~1000U/ mL、15~120ug/mL;
[0025] 11)定期補充新鮮的X-VIV015培養基和IL-2、胎牛血清,使得免疫細胞的密度不大 于3X106 個/mL;
[0026] 12)連續培養12~16天。
[0027] 相對于現有技術,本發明的有益效果為:本發明的增加免疫細胞得率的方法,包括 人外周血稀釋、免疫細胞的分離、凍存、復蘇及誘導擴增培養步驟,通過提取、保存健康時的 細胞,并在后期誘導擴增培養,大大提高了免疫細胞的得率,在凍存的過程中采用特有的細 胞凍存液可有效的保持免疫細胞的活性,在誘導擴增培養的過程中加入了海帶多糖,能夠 得到較高倍數的擴增和較高純度的細胞,從而顯著增加了免疫細胞的得率。
【附圖說明】
[0028]圖1為實施例9擴增培養后的NK細胞形態觀察圖。
[0029]圖2為對照例1擴增培養后的NK細胞形態觀察圖。
[0030]圖3為實施例12擴增培養后的CIK細胞形態觀察圖。
[0031 ]圖4為對照例2擴增培養后的CIK細胞形態觀察圖。
[0032]圖5為擴增培養后的NK細胞增殖曲線圖。
[0033]圖6為擴增培養后的CIK細胞增殖曲線圖。
【具體實施方式】
[0034]以下結合附圖及具體實施例對本發明進行詳細描述。
[0035]實施例1、免疫細胞的分離
[0036] 1)采集人外周血,用生理鹽水稀釋,制得血液稀釋液,外周血與生理鹽水的體積比 為 1:5;
[0037] 2)將Ficoll分離液加入sepmate離心管的底部,將步驟1)中的血液稀釋液緩慢的 加到Ficο11分離液上層,血液稀釋液與Ficο11分離液的體積比為1: 5,離心機4 0 0g離心 30min,分離外周血免疫細胞,洗滌二次離心收集外周血單個核細胞。
[0038]實施例2、免疫細胞的分離
[0039] 1)采集人外周血,用生理鹽水稀釋,制得血液稀釋液,外周血與生理鹽水的體積比 為5山
[0040] 2)將Ficoll分離液加入sepmate離心管的底部,將步驟1)中的血液稀釋液緩慢的 加到Ficoll分離液上層,血液稀釋液與Ficoll分離液的體積比為5:1,離心機700g離心 20min,分離外周血免疫細胞,洗滌二次離心收集外周血單個核細胞。
[0041]實施例3、免疫細胞的分離
[0042] 1)采集人外周血,用生理鹽水稀釋,制得血液稀釋液,外周血與生理鹽水的體積比 為 1:1;
[0043] 2)將Ficoll分離液加入sepmate離心管的底部,將步驟1)中的血液稀釋液緩慢的 加到Ficoll分離液上層,血液稀釋液與Ficoll分離液的體積比為1:1,離心機1000g離心 10min,分離外周血免疫細胞,洗滌二次離心收集外周血單個核細胞。
[0044] 實施例4、免疫細胞的凍存
[0045] 細胞凍存液:將茶多酚加入人血白蛋白中,茶多酚的終濃度為lmg/mL,按體積比人 血白蛋白:DMS0 = 2:1,緩慢的加入DMS0,得到細胞凍存液。
[0046] 將收集的免疫細胞利用人血白蛋白重懸,再將上述細胞凍存液緩慢加入到細胞懸 液中,細胞凍存液中人血白蛋白與DMS0的體積比為5:1,免疫細胞凍存密度為2X106個/mL。
[0047] 實施例5、免疫細胞的凍存
[0048]細胞凍存液:將茶多酚加入人血白蛋白中,茶多酚的終濃度為10mg/mL,按體積比 人血白蛋白:DMS0 = 8:1,緩慢的加入DMS0,得到細胞凍存液。
[0049] 將收集的免疫細胞利用人血白蛋白重懸,再將上述細胞凍存液緩慢加入到細胞懸 液中,細胞凍存液中人血白蛋白與DMS0的體積比為17:1,免疫細胞凍存密度為6X106個/ mL〇
[0050] 實施例6、免疫細胞的凍存
[0051 ]細胞凍存液:將茶多酚加入人血白蛋白中,茶多酚的終濃度為5mg/mL,按體積比人 血白蛋白:DMS0 = 5:1,緩慢的加入DMS0,得到細胞凍存液。
[0052] 將收集的免疫細胞利用人血白蛋白重懸,再將上述細胞凍存液緩慢加入到細胞懸 液中,細胞凍存液中人血白蛋白與DMS0的體積比為10:1,免疫細胞凍存密度為3X106個/ mL〇
[0053] 實施例7、免疫細胞的復蘇誘導擴增NK細胞
[0054]取實施例4、5或6的凍存管水浴溶解后,將凍存管中的細胞懸液轉移至X-VIV015培 養基中,細胞懸液與X-VIV015培養基的體積比為1:4,混勻后200g離心5min,將洗滌離心后 的PBMC用X-VIV015培養基重懸,接種于培養瓶中;
[0055]向上述免疫細胞懸液中全量添加細胞生長因子11^-2、幾-15、幾-21、海帶多糖,其 終濃度分別為2001]/11^、2001]/1^、2001]/1^、151^/1^,按總體積5%的量添加胎牛血清;定期 補充新鮮的X-VIV015培養基和11^-2、幾-15、幾-21、海帶多糖、胎牛血清,使得免疫細胞的密 度不大于3X106個/mL;連續培養12~16天。
[0056]實施例8、免疫細胞的復蘇誘導擴增NK細胞
[0057]取實施例4、5或6的凍存管水浴溶解后,將凍存管中的細胞懸液轉移至X-VIV015培 養基中,細胞懸液與X-VIV015培養基的體積比為1:10,混勻后600g離心15min,將洗滌離心 后的PBMC用X-VIV015培養基重懸,接種于培養瓶中;
[0058]向上述免疫細胞懸液中全量添加細胞生長因子11^-2、幾-15、幾-21、海帶多糖,其 終濃度分別為10001]/11^、10001]/11^、10001]/11^、1201^/1^,按總體積20%的量添加胎牛血清 ; 定期補充新鮮的X-VIV015培養基和11^-2、幾-15
當前第1頁1 2 
網友詢問留言 已有0條留言
  • 還沒有人留言評論。精彩留言會獲得點贊!
1
韩国伦理电影